Flowjo.7.6.1 crack - 『精品软件区』
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Flowjo.7.6.1 crack
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楼主以后发帖子记得带图片的喽
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FlowJo是由美国斯坦福大学设计研发的一款非常强大的流式数据分析软件。它独特的人性化设计，简单的操作可以让您快速分析和管理复杂的实验数据，同时给出详细的分析报告。它可以分析任何流式细胞仪收集的流式数据，是流式领域最受推荐的一款专业分析软件。
以上来自百度
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你想被关小黑屋吗？什么内容介绍没有图片也没有，你没有学习过规则。
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多谢楼主分享
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没图，没真相& && && && &&&
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收藏了，谢谢楼主分享
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你想被关小黑屋吗？什么内容介绍没有图片也没有，你没有学习过规则。
新手，以后改进，谢谢提醒。
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说明清楚，这样会违规的
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各位大侠：
& &你们好！小弟最近做流式细胞周期测定，但不知道怎么用Flow Jo来分析数据，十分困惑，还请这方面的高手帮帮忙啊！小弟不甚感激啊！
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看看ATTACHED文件是否有助于你的Cell Cycle分析
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抱歉不知怎样上传
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终于传上了
该用户从未签到
& && & 谢谢了！你用这个软件分析过细胞周期数据吧？Model选哪种好点呢？我用Dean-Jett-Fox怎么没有S期的拟合呢？劳驾你帮下忙了！
该用户从未签到
& &hbl_ca大侠，我的实验数据在另外一篇“求助流式细胞周期检测的数据结果分析”的帖子上已经附上，麻烦你能不能结合实验数据教下小弟我呢？哎，新手，对流式还是一知半解，盼望你能帮助下！谢谢！
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两个帖子问题一并回答。
一&&PI染色法测定细胞死亡最大的缺陷就是很容易混淆细胞碎片，坏死和真正的凋亡。因此真正测定凋亡最佳的方法是组合annexin-V/PI 与annexin-V/7-ADD，取决于annexin-V的标记。但有时，由于药物或siRNA的处理，尽管在显微镜下，明明观察到细胞凋亡的特征，如blebbing，但annexin就是染不上，只有在这种情况下才改用PI或DAPI等染色方法，来观察细胞“死亡”，包括细胞碎片和坏死的细胞。因而在数据采集是要设好阈值，去除细胞碎片。
二 细胞周期分析一般只GATE活细胞，尤其是你用FLOWJO软件分析是更是如此，否则该软件中的三种MODEL中任何一种都无法拟合数据。由于只分析活细胞，因此该软件分析G1+S+G2/M三者的百分数只和往往是100%。
三 如你真想既分析细胞死亡（Sub G1），又想分析细胞周期，据我所知，最好的软件就是ModFit。因该软件主要是用于分析细胞周期的。因它有一选项专门用于测定凋亡峰，既sub G1。如你用FLOWJO来GATE所有的细胞，同时分析凋亡和细胞周期，相当困难。这也许是为什么你无法用FLOWJO来拟合你的数据的一个原因吧。
四 如你只有FLOWJO用于数据分析，你可分两步来分析。1 GATE所有的数据来分析sub G1峰所占的比例，既细胞死亡。2 GATE活细胞来进行细胞周期分析。Watson 是比较简单的，先可TRY一下。
五 doc文件无法进行分析。
六&&我这有Cell_Cycle_Tutorial但有8Mb，需要分割才能上传，或直接到/home/tutorials/下载。你可按照里面的说明一步步来熟悉细胞周期分析。但该教学只适合FLOWJO。根据你提出的问题，我想你有该软件。
该用户从未签到
本帖最后由 xiajing_acm 于
17:50 编辑
& && &&&谢谢hbl_ca！我想再补充下我的情况，我实在外面上的机，流式细胞仪的型号是Beckman FC500。仪器上有自带的分析软件CXP软件，上机的师兄帮我分选细胞后，上面就自动得出了细胞分布的直方图，是LMD格式的文件。然后我把LMD文件的结果和自带的CXP分析软件拷回来后，自己用标尺（Single Linner Region）划出了各期的范围，系统就自己算出了各期所占的比例分布。结果见附件！
& && & 我现在就想知道毕业论文或者发文章的话就用这个由仪器自带的CXP分析软件得出的结果行不行呢？还是要用Modfit 或者Flow Jo等专业分析软件分析才会被认可呢？要用Flow Jo分析的话导入LMD文件后就是一个Histogram Plot，我尝试着用Cell Cycle拟合，可是每次要自己拉G1与G2的分界线，拉到对应峰的中间之后拟合后的结果又很奇怪，很困惑，很迷茫！望大侠指点啊！再次谢过！
17:50 上传
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签到天数: 1 天[LV.1]初来乍到
xiajing_acm
我没用过Beckman FC500，因此我无法确切回答你yes or no。不过既然是仪器带的分析软件，那你的论文以及将来要发表文章应该可以接受，只不过你要注明所使用仪器和分析软件。因我没有使用过CXP软件去分析数据，我的几个问题是你根据什么来划分G1，S，G2/M？那你如何证明你划分的细胞周期是可以接受的呢？是不是软件软件在划分是有一定的标准呢？因此我个人认为，如果你确信划分G1，S，G2/M是合理的以及可以接受的话，那你的分析就没有问题。此外，我读了一下Beckman FC500的使用手册，分析细胞周期是这样評估的：“Data 收取後，我們通常會檢視G0G1 Phase 的變異係數（CV 值），用以評估細胞的固定、染色過程是否完善。一般來說，我們會要求G0G1Phase 的CV 值必須小於8，代表細胞的固定過程良好，並具有均一的染色結果。CV 值大於8 的數據，必須捨棄不用”。 因此，如果你分析时的CV 小於8，分析结果就应该可以接受。 另外，Beckman FC500可以输出FCS 3.0文件格式，而这种文件格式是通用，包括可被FLOWJO打开。正如我以前所写的，FLOWJO主要是分析“活细胞”，因此分析时要GATE活细胞。我不知道当你用FLOWJO打开LMD文件时，Histogram Plot是否显示subG1峰。如果yes你自然无法分析你的数据。如果你有FCS 3.0文件格式输出的数据，如果不是太多的话，我倒可以帮你分析（我们实验室有正版的FLOWJO），来比较一下彼此的差别究竟有多大。
该用户从未签到
& &谢谢啦！你说的FCS3.0文件包括LMD文件吗？LMD文件压缩见附件，可能的话帮我分析下，然后结果发给我下？劳驾了！
09:31 上传
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美开发细菌制造生物燃料技术实时荧光定量PCR出现很多乱峰，求大神们帮电泳单引物跑出来为什么是这个样子电泳单引晒动图——活体细胞4D成像新手段，细胞筛选你还在搬砖吗
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wx_非凡人_lDsv9大叔级摄影爱好者，喜欢分享murongxiaoxiao积极有责任心，热心公益事业绝对零度红米达人，爱拍照的北京女孩
逛了这许久，何不进去瞧瞧？在FlowJo10中调整流式图的坐标轴
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|个人分类:|系统分类:|关键词:FlowJo, 流式，数据分析，流式图，坐标轴，调整
在FlowJo10中调整流式图的坐标轴作者：蔡何青，FlowJo技术专员我们分析流式数据的目标之一是为了得到高质量的流式图。有时候一些数据的细胞压轴，我们需要对流式图的坐标轴进行调整，才能将所有细胞都呈现出来。在FlowJo10中可以灵活地调整流式图的坐标轴，这些调整包括：1. 更换坐标轴的类型：Linear(线性), Logarithmic(对数), Logicle(双指数) (FlowJo中称为Biex)2. 调整坐标轴的范围3. 调整Biex坐标轴的有关参数：Extra Neg. Decades与Width Basis对于调整流式图的坐标轴，我们经常遇到的一个疑问是：会不会是人为地更改了数据导致了数据呈现的更好？答案是否定的。更改流式图的坐标轴其实质是用不同刻度的坐标轴来显示数据，对原始数据的各项数值都没有做任何改动。& &首先，我们来看这三种类型的坐标轴：Linear：坐标轴的刻度是按照50K、100K、150K来标注的，是线性递增的；相当于下图中的linear方程（绿色直线）Logarithmic：坐标轴的刻度是按照100、101、102来标注的，是指数递增的；相当于下图中的exponential方程（黑色曲线）；坐标轴的刻度数值＞0，不能显示0及0以下的数据Logicle (Biex)：能显示0及0以下的数据；是按照下图中的Logicle方程来标注刻度的，见下图中的红色曲线，在低位段（此图例中大约为Y轴的-25至+25位段）是以接近于linear方程（绿色直线）的形式来标注刻度，在高位段（此图例中大约为Y轴＜-25位段和＞25位段）是以接近于exponential方程（黑色曲线）的形式来标注刻度&（图片引自：David R. Parks. 2006. A New "Logicle" Display Method Avoids Deceptive Effects of Logarithmic Scaling for Low Signals and Compensated Data. Cytometry Part A）那么，什么时候用哪种坐标轴呢？Linear：散射光参数，如FSC和SSCLogarithmic：荧光参数，Logicle (Biex)：荧光参数，多色实验的荧光参数一般都要使用Logicle轴，因为荧光补偿之后会产生负值FlowJo 10中的自定义参数轴窗口点击图形窗口界面的“T”按钮，选择“自定义参数轴”，打开自定义参数轴窗口，如下图所示：&①更换坐标轴的类型：Linear，Logarithmic，Biex②手动输入坐标轴的范围，包括最大值和最小值③通过增加和减少按钮调整坐标轴的范围④当使用Biex坐标轴时，调整Extra Neg. Decades值的大小，⑤当使用Biex坐标轴时，调整Width Basis值的大小（关于Extra Neg. Decades与Width Basis的详细解释，请参考博文中的内容）应用实例——多色流式数据分析时调整某个荧光参数的坐标轴数据来源：Accuri C6采集的数据步骤：①导入数据，设门分析后得到了CD4 vs. CD8的点图，如下图所示。对于补偿过的荧光参数，FlowJo 10会默认以Biex坐标轴来显示，而且软件自动对其Extra Neg. Decades与Width Basis值进行了调整②在下图中，我们能发现最右边的一群细胞有压轴的现象，而且软件也给出了提示：有一小部分细胞压在了X轴上，因此需要对Y轴坐标轴的范围进行调整&③点击Y轴的T按钮，打开“自定义参数轴”窗口，将Extra Neg. Decades由默认的0调为1，再增加一段负的刻度段来将0以下的所有数据完全显示出来。操作如下图所示&④点击“应用”按钮，得到结果如下图所示：原来压轴的数据完全显示出来了&
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